- A+
摘 要:目的 制备聚酰胺-胺树枝状大分子包载白藜芦醇纳米载体复合物(Res-PAMAM-Ac),并考察其稳定性和安全性。方法 采用发散法合成空白载体,并进行乙酰化修饰,核磁共振图谱(1H-NMR)、红外光谱(IR)对载体进行表征,粒径及Zeta电位检测考察载体性质;逆相蒸发法制备Res-PAMAM-Ac,HPLC检测载药量、包封率以及稳定性;MTT法考察载体和复合物对人肺癌A549细胞的细胞毒性;溶血性试验评价载体和复合物的生物安全性。结果 成功合成Res-PAMAM-Ac,大小均匀,平均粒径(167.30±21.70)nm,PDI为0.115±0.006,电位(19.27±0.35)mV;平均载药量(76.99±1.30)mg/g,包封率(29.63±2.70)%,稳定性参数(KE)小于0.15,且药物无明显析出;复合物质量浓度在30 μg/mL以下时对人肺癌A549细胞具有较小毒性;载体及复合物溶血率低于5%,视为生物安全。结论 制备的Res-PAMAM-Ac粒径均匀、载药量较好、稳定性高、毒性小。
白藜芦醇(resveratrol,Res)是一种多酚类物质,又名(E)-3,5,4-三羟基二苯乙烯,分子式为C14H12O3。Res存在于虎杖、葡萄、蓝莓等植物中,具有抗肿瘤、抗心血管疾病及抗氧化等作用[1-4],可以作为食品添加剂和抗肿瘤药物开发的原料,被称为继紫杉醇之后的新一代天然抗肿瘤药物。研究发现,Res可通过调节相关分子靶点来控制肿瘤细胞的侵袭与转移[5-6]。Res具备众多的药理活性及实用价值而得到广泛关注,但Res是脂溶性药物,水溶性差,靶向性不强,靶部位几乎不能达到有效治疗浓度,影响药效的发挥。想要充分发挥Res的药用价值,则需要弥补其缺点。
目前研究主要为Res的微/纳米系统,如固体脂质纳米粒子、微囊、微球和环糊精包合物等[1,7]。这些研究都是通过改变剂型从而使Res的体内生物利用度和体内代谢情况得到改善。聚酰胺-胺(polyamido-amine,PAMAM)树状大分子是一种人工合成的新型纳米级大分子化合物,具有高度对称、无免疫原性及良好的生物相容性等优点[8],内部空腔的包载是其主要载药方式之一[9]。在现有的研究中,PAMAM已经被广泛应用在许多方面,主要包括纳米药物及基因载体、免疫诊断纳米试剂、纳米疫苗和核磁共振造影剂等。目前PAMAM已成为抗癌、抗炎、抗病毒药物研究最多的载体,基于PAMAM的药物递送系统具有良好肿瘤靶向性、载药量高、水溶性强以及细胞毒性低等显著优点[10],本实验采用发散法合成4.0代PAMAM大分子载体材料,并进行乙酰化。再通过逆相蒸发法制备PAMAM-Ac包载Res的新型载药系统Res- PAMAM-Ac。考察其形态特征、理化性质和细胞毒性,以期提高Res的治疗效果。
1 材料与仪器
1.1 仪器
RE-52AA型旋转蒸发器,上海亚荣生化仪器厂;HWCL-3型恒温磁力搅拌仪、SHB-3型循环水式真空泵,郑州长城工贸有限公司;Agilent 1260- API500型高效液相色谱仪,美国安捷伦公司;FTIR- 8400s型红外光谱仪,日本Shimadzu公司;赛多利斯BSA224S型万分之一电子天平,德国赛多利斯公司;ZEN3690型激光粒度分析仪,英国马尔文公司;Kinetex C18色谱柱,美国菲罗门公司;FDU型冻干机,日本东京理化器械株式会社;ZD-85型恒温气浴振荡器,常州荣华仪器制造有限公司;酶标仪,美国Bio-Rad公司;0.22 μm微孔滤膜,美国赛默飞世尔科技公司。
1.2 药品与试剂
乙二胺(EDA),成都艾科达化学试剂有限公司;丙烯酸甲酯(MA),山东西亚化学试剂股份公司;乙酸酐(Ac),天津天大化工实验厂;三乙胺(TEA),北京百灵威科技有限公司;Res原料药,上海思域化工科技有限公司,批号B1807119,质量分数99%;二甲基亚砜(DMSO),天津市津东天正精细化学试剂厂;甲醇,优级纯试剂,天津市津东天正精细化学试剂厂;DMEM培养基,美国Mediatech公司;3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐(MTT)、100%灭活胎牛血清、0.25%胰蛋白酶、人肺癌A549细胞由华北理工大学医学实验研究中心提供;SD大鼠,由华北理工大学实验动物中心提供,许可证号SCXK(京)2014-0004。
2 方法与结果
2.1 PAMAM的合成与纯化
PAMAM以乙二胺为核,其末端的2个氨基与丙烯酸甲酯进行迈克尔加成反应制备0.5代PAMAM,之后再与乙二胺进行酰胺化反应形成末端为氨基的1.0代PAMAM,反复进行以上步骤合成4.0代的粗产品PAMAM,产率为76.4%。PAMAM G4.0的合成过程见图1。因残存的未反应的乙二胺和丙烯酸甲酯会影响PAMAM合成的完整性,故反应结束后采用减压蒸馏的方式除去杂质。充分超声后再用透析法对产物进一步纯化,将粗品溶于适量的蒸馏水并装入截留相对分子质量6 000的透析袋中,用大量蒸馏水透析24h,将产物的水溶液用0.22μm微孔滤膜滤过后冷冻干燥,得到纯品PAMAM G4.0,产率为70.7%。
2.2 PAMAM-Ac载体材料的制备与纯化
称取1.00 g PAMAM G4.0溶于100 mL无水甲醇,加入0.5 mL三乙胺,混匀。再取0.3 mL乙酸酐和60 mL无水甲醇混匀后置于恒压滴液漏斗中,逐滴加入到上述溶液,室温搅拌过夜。PAMAM-Ac G4.0的合成过程见图2。反应结束后减压蒸馏除去甲醇,选用截留相对分子质量为6 000的透析袋透析24 h后得到PAMAM-Ac G4.0载体材料。
2.3 PAMAM-Ac G4.0载体材料的表征
2.3.1 核磁共振氢谱(1H-NMR)检测及结果 以氘代氯仿(CDCl3)为溶剂,对PAMAM G4.0和PAMAM-Ac G4.0进行1H-NMR分析。结果(图3)显示PAMAM G4.0在δ 1.932处存在s峰,说明有-RNH上的H的吸收峰;δ 3.219~3.254处有-NH- CH2-的H吸收峰;δ2.702~2.777处为多峰,说明有=NCH2CH2-的吸收峰。与PAMAM G4.0的1H-NMR相比,PAMAM-Ac G4.0在δ 1.866处出现了s峰,其为酰胺键-CO-NH-的H吸收峰,PAMAM-Ac G4.0在δ 2.870处有明显的乙酰基-CO-CH3吸收峰。
2.3.2 红外光谱检测及结果 采用红外光谱检测法对PAMAM G4.0和PAMAM-Ac G4.0进行表征,结果(图4)显示在3 283.14 cm−1处存在-NH2的吸收峰;2 937.21 cm−1和2 871.17 cm−1处分别是-CH2-对称伸缩振动和不对称伸缩振动的特征吸收峰;在1 645.50 cm−1和1 558.25 cm−1出现-CO-NH-的特征吸收峰。
2.3.3 平均粒径、Zeta电位考察及结果 分别称取0.20 mg PAMAM G4.0和PAMAM-Ac G4.0载体材料溶于1 mL甲醇,利用马尔文激光粒度分析仪在25 ℃下检测粒径和Zeta电位,测得PAMAM G4.0载体的平均粒径为(8.00±1.30)nm,PDI为0.119±0.031,Zeta电位为(1.19±0.40)mV;PAMAM-Ac G4.0载体的平均粒径为(8.07±0.71)nm,PDI为0.121±0.010,Zeta电位为(−6.06±1.84)mV。
2.4 Res-PAMAM-Ac的制备及表征
2.4.1 Res-PAMAM-Ac的制备 称取PAMAM-AcG4.0 1.00 g置于10 mL离心管中,用10 mL甲醇充分溶解后,再加入1.00 g(过量)Res,在25 ℃下,恒温振荡72 h。反应停止后加入10 mL纯水,逆相蒸发除去有机相,将溶于水的复合物与不溶于水的Res进行抽滤分离,滤液冷冻干燥后即得Res- PAMAM-Ac复合物。
2.4.2 色谱条件 色谱柱Diamonsil C18(250 mm×4.6 mm,5.0 μm);柱温30 ℃;流动相乙腈-水溶液(体积比为30∶70);体积流量1 mL/min;紫外检测波长306 nm;进样量10 μL;检测时间15 min。Res保留时间8.2~9.5 min。
2.4.3 线性关系考察 取Res原料药溶于甲醇溶液配制质量浓度为0.5 mg/mL的储备液,量取储备液稀释制得质量浓度分别为250.00、125.00、62.50、31.25 μg/mL的Res(甲醇溶液)对照品。取储备液及各质量浓度样品1 mL,经0.22 μm微孔滤膜滤过后按“2.4.1”项色谱条件置于高效液相色谱仪检测,记录峰面积(Y),得到关于峰面积和质量浓度的线性回归方程Y=73 248 X+238.46,r2=0.999 3。Res在质量浓度为10~250 μg/mL时与峰面积线性关系良好。
2.4.4 方法学考察 取Res-PAMAM-Ac G4.0和Res原料药,用甲醇溶液配制成300.0、150.0、50.0 μg/mL的高、中、低3种质量浓度,利用高效液相色谱仪在同天内每个质量浓度测量5次得到日内精密度;连续测定5d,得日间精密度。结果日内和日间RSD值分别为7.84%、5.99%、8.55%和3.99%、5.71%、9.35%(n=5)。取Res-PAMAM-Ac G4.0和Res原料药,用纯水配制成30、25、20 μg/mL的高、中、低3个质量浓度,25 ℃恒温振荡72 h,经冷冻干燥除水后用甲醇定容,之后过0.22 μm微孔滤膜按“2.4.2”项色谱条件检测,测得高、中、低质量浓度回收率分别为(92.67±1.60)%、(98.36±4.44)%、(99.75±5.31)%(n=3)。其日内、日间精密度及回收率均满足实验要求。
2.4.5 载药量的测定 采用甲醇浸提法测定复合物的载药量,将一定量的复合物用甲醇溶解,超声充分浸提,按“2.4.2”项色谱条件检测,由回归方程算得复合物中药物质量浓度,进而计算载药量。
载药量=W1/W2
W1为复合物中Res质量,W2为复合物质量
2.4.6 反应时间对载药量的影响 取PAMAM-Ac G4.0用甲醇溶解配制质量浓度为5 mg/mL的8份样品,均加入100 mgRes原料药,置于25 ℃恒温气浴振荡器中,每隔9 h取出1份样品加入等量的纯水,逆相蒸发除去有机相,抽滤并将滤液冷冻干燥后加入1 mL甲醇复溶,超声后按“2.4.2”项色谱条件检测,每份重复测定5组,结果代入回归方程。按“2.4.5”公式计算药物含量,结果(表1)显示PAMAM G4.0在63 h后载药量逐渐趋于平稳。
表1 载药量随反应时间的变化 (±s, n = 5)
Table1 Drugloadingvarieswithreactiontime(±s,n=5)
反应时间/h | 载药量/(mg∙g−1) | 反应时间/h | 载药量/(mg∙g−1) |
9 | 1.61±2.79 | 45 | 67.00±3.07 |
18 | 25.24±2.84 | 54 | 74.49±1.83 |
27 | 46.97±2.63 | 63 | 76.21±2.77 |
36 | 48.53±2.82 | 72 | 76.91±2.57 |
2.4.7 pH值对载药量的影响 取PAMAM-Ac G4.0用甲醇溶解配制质量浓度为1 mg/mL的5份样品。由于PAMAM-Ac表面含有大量-NH2,检测pH值为10,所以先用稀盐酸调节各组pH值至5、6、7、8、9,再分别加入50 mgRes原料药,置于25 ℃恒温气浴振荡器中,72 h后取出加入等量纯水,逆相蒸发除去有机相,抽滤并将滤液冷冻干燥后加入1mL甲醇复溶,超声后按“2.4.2”项色谱条件检测,平行测定5组,结果代入回归方程,根据“2.4.5”项公式计算载药量。结果如表2所示,平均载药量达到(76.99±1.30)mg/g(n=5)。
2.4.8 Res-PAMAM-Ac平均粒径、Zeta电位检测及结果 配制Res-PAMAM-Ac水溶液10 mg/mL,超声20 min,利用马尔文粒径检测仪检测,测得Res- PAMAM-Ac平均粒径为(167.30±21.70)nm,PDI为0.115±0.006,Zeta电位为(19.27±0.35)mV。由结果可知,随着乙酰化和药物的包载,分散体系逐步趋向稳定。
2.4.9 包封率测定及结果 采用透析法测定纳米载体的包封率,取Res-PAMAM-Ac,用磷酸盐缓冲液(PBS)溶解配制质量浓度为1mg/mL的储备液,取2 mL储备液稀释数倍后置于截留相对分子质量为 6 000的透析袋,并在400 mL的PBS中透析,24 h后收集透析液并定容,按“2.4.2”项色谱条件检测游离药物含量,由公式算得Res-PAMAM-Ac包封率为(29.63±2.70)%(n=5)。
包封率=(W0-W1)/W0
W0为药物总量,W1为游离药物量
2.5 细胞毒性实验
由于肿瘤细胞较正常细胞对于毒性更加敏 感[11],所以本实验选用人肺癌A549细胞,并采用MTT法分别考察PAMAM、PAMAM-Ac空白载体和Res-PAMAM-Ac含药载体对人肺癌A549细胞的细胞毒性。取对数生长期的人肺癌A549细胞以6×103个/孔接种于96孔板中,在37 ℃、5% CO2环境中孵育24 h后弃去培养液。分别加入含2%血清的DEME培养基稀释的PAMAM、PAMAM-Ac空白 载体(浓度依次为0.005、0.01、0.1、1、10、20 μmol/L)[7]和Res-PAMAM-Ac含药载体(质量浓度依次为1、10、30、50、100、200 μg/mL),每孔100 μL,每个浓度设置4个复孔,只加入细胞的DMEM培养基作为阴性对照。继续培养24 h,弃去含药培养液,用PBS清洗2次后,每孔加入5 mg/mL MTT试剂继续孵育30 min,然后吸去MTT试剂,加入DMSO溶液振荡摇匀,用酶标仪在490 nm处测定每孔的吸光度(A)值,并根据实验组和对照组A值的比值计算细胞存活率。实验重复3次。由结果(表3、4)可知,PAMAM空白载体在浓度为1 μmol/L时细胞毒性最小,乙酰化后的载体随着浓度的增大,细胞毒性逐渐增强,但在20μmol/L的条件下,细胞存活率依然接近100%,表明乙酰化的空白载体
表3 PAMAM G4.0、PAMAM-Ac G4.0对人肺癌A549细胞的毒性 (±s, n = 3)
Table3 ViabilitiesofA549cellsafterbeingtreatedwithPAMAMG4.0 andPAMAM-AcG4.0 (±s,n=3)
浓度/(μmol∙L−1) | 细胞存活率/% | |
PAMAM G4.0 | PAMAM-Ac G4.0 | |
0.005 | 91.71±2.14 | 99.50±0.88 |
0.01 | 93.13±1.49 | 99.23±0.68 |
0.1 | 93.10±1.76 | 98.91±1.71 |
1 | 97.74±2.44 | 98.81±3.19 |
10 | 82.09±2.45 | 96.85±1.23 |
20 | 78.05±2.61 | 90.63±2.25 |
表4 Res-PAMAM-Ac对A549细胞的毒性 (±s, n =3)
Table4 ViabilitiesofA549cellsafterbeingtreatedwithRes-PAMAM-Ac (±s,n=3)
质量浓度/(μg∙mL−1) | 细胞存活率/% |
1 | 99.83±2.84 |
10 | 98.80±3.07 |
30 | 98.78±4.59 |
50 | 95.55±3.03 |
100 | 96.15±3.19 |
200 | 95.58±0.74 |
有较好的体外安全性。在相同浓度下,PAMAM对A549细胞的细胞毒性显著高于PAMAM-Ac,这表明乙酰化显著降低了其细胞毒性。含药载体的细胞毒性显示随着药物质量浓度的增加,各组含药载体对A549细胞的毒性逐渐增加。
2.6 溶血实验
采集SD大鼠眼球后静脉血液2 mL,置于抗凝采血管内,3 000 r/min、4 ℃离心10 min,除去血清后加入0.9%生理盐水再次离心10 min,清洗下层的红细胞至上清液为无色。以0.9%生理盐水为稀释剂,制备2%红细胞悬液。将0.1 μmol/L PAMAM-Ac G4.0和30 μg/mL Res-PAMAM-Ac溶液与等体积的红细胞悬液混合,取空白血加0.9%生理盐水作为阴性对照,空白血加蒸馏水作为阳性对照。将样品置于37 ℃水浴中孵育1 h后,离心收集上清液测量样品在540 nm波长处的A值,计算溶血率(HR)[12]。结果测得PAMAM-Ac G4.0和Res-PAMAM-Ac的溶血率仅为3.24%和2.05%(n=3),符合《中国药典》2015年版对溶血率小于5%的要求。
HR=(A1-A0)/(A2-A0)
A0为阴性对照组吸光度,A1为实验组吸光度,A2为阳性对照组吸光度
2.7 稳定性考察
将制得的Res-PAMAM-Ac进行长期稳定性试验,放置条件为4 ℃、60 d,观察样品外观以及药物渗漏情况,并进行质量浓度检测。
将制得的Res-PAMAM-Ac进行加速离心实验(10 000 r/min,15 min),并在离心前后,分别用高效液相色谱仪测定在306 nm波长处的峰面积,根据公式计算稳定性参数(KE)。
KE=(C0-C)/C0
C0为纳米载体稀释液放置或离心前的药物质量浓度,C为纳米载体稀释液放置或离心后的药物质量浓度
作为评价纳米载体稳定性的指标,KE愈小说明稳定性愈好[13],结果(表5、6)显示Res-PAMAM-Ac的长期KE和加速离心KE平均值分别为0.05和0.12,均小于0.15,说明纳米载药体系稳定性良好。
3 讨论
本实验以PAMAM为载体,利用其内部疏水空间包埋Res为载药方式合成Res-PAMAM-Ac纳米载药复合物。首先采用发散法合成PAMAM载体材料,在合成过程中随着PAMAM代数的增加,支链的长度和
来源:中国药学会系列期刊!
目前评论:0